Artículo
Original
Bacteriología
Kasmera 47(2):123-130, Julio-Diciembre, 2019
P-ISSN
0075-5222 E-ISSN 2477-9628
https://doi.org/10.5281/zenodo.3406805
Frecuencia y susceptibilidad a
penicilina y meticilina de aislamientos ambientales de Staphylococcus aureus
en un hospital de Cuenca
Frequency
and susceptibility to penicillin and methicillin of Staphylococcus aureus
environmental isolations at a Cuenca´s hospital
Andrade T Carlos https://orcid.org/0000-0003-3983-1314. Unidad Académica de Salud y Bienestar,
Carrera de Odontología, Laboratorio de Genética y Biología Molecular del Centro
de Investigación, Innovación y Transferencia de Tecnología. Universidad
Católica de Cuenca. Dirección Postal: Av. de las Américas y Humboldt (esquina),
Cuenca-Ecuador. Código Postal:
010100. Teléfono: +593-992910299. E-mail: candradet@ucacue.edu.ec
Orellana B, Paola. https://orcid.org/0000-0001-6276-0521.
Unidad Académica de Salud y Bienestar, Carrera de Odontología, Laboratorio de
Genética y Biología Molecular del Centro de Investigación, Innovación y
Transferencia de Tecnología. Universidad Católica de Cuenca. Cuenca-Ecuador.
E-mail: porellana@ucacue.edu.ec
Resumen
Staphylococcus aureus es un patógeno asociado con infecciones intrahospitalarias comúnmente hallado en las fosas nasales y las manos del personal de salud; así como, en superficies ambientales, las cuales se convierten en potenciales reservorios y vehículos de transmisión de infecciones. En este estudio se analizó la frecuencia y la susceptibilidad a penicilina y meticilina de aislamientos ambientales de S. aureus en un hospital de Cuenca. Se recolectaron 50 muestras (30 de dos quirófanos y 20 de la sala de cuidados intensivos). S. aureus se identificó por pruebas fenotípicas y detección molecular del gen nuc. La susceptibilidad a meticilina y penicilina se determinó por el método de difusión del disco en agar y los genes blaZ y mecA por reacción en cadena de la polimerasa. La frecuencia de S. aureus fue de 6% (3/50 cepas). La resistencia a penicilina y meticilina fue de 66,6% (2/3 cepas). Los genes blaZ y mecA se detectaron en las dos cepas resistentes a penicilina y meticilina. La baja frecuencia de S. aureus puede estar relacionada con los ambientes analizados; ya que, las superficies muestreadas son áreas donde se hace énfasis en la aplicación de protocolos de higiene y desinfección para asegurar una adecuada descontaminación.
Palabras
claves: Staphylococcus aureus, quirófano, infección hospitalaria, resistencia a penicilina, resistencia a la
meticilina
Abstract
Staphylococcus aureus is a pathogen associated with intrahospital
infections commonly found in the nasal cavities and the hands of health
personnel, as well as, on environmental surfaces; which become potential
reservoirs and transmission vehicles of infections. In this study the frequency and susceptibility to
penicillin and methicillin of
environmental isolates of S. aureus in a hospital to Cuenca were analyzed. 50 samples (30
of two operating room and 20 of the intensive care room) were collected. S. aureus was identified by phenotypic
tests and molecular detection of the nuc gene. The susceptibility to methicillin and penicillin
was determined by agar disc diffusion method
and the blaZ and mecA
genes by polymerase chain reaction. The frequency of S. aureus was 6% (3/50 strains). Resistance to penicillin and
methicillin was 66.6% (2/3 strains). The blaZ and mecA genes were detected in the
two strains resistant to penicillin and methicillin. The low
frequency of S. aureus may be related to the environments analyzed;
because the surfaces sampled are areas where emphasis is placed on the
application of hygiene and disinfection protocols for ensure adequate
decontamination.
Keywords: Staphylococcus aureus, operating rooms, cross infection,
Penicillin Resistance, Methicillin
Resistance
Recibido: 20-07-2019 / Aceptado: 03-09-2019 / Publicación en línea: 10-09-2019
Como Citar: Andrade T Carlos, Orellana B Paola. Frecuencia y susceptibilidad a penicilina y meticilina de aislamientos ambientales de Staphylococcus aureus en un hospital de Cuenca. Kasmera. 2019;47(2):123-130. doi 10.5281/zenodo.3406805
Introducción
Staphylococcus aureus forma parte de la microbiota de la piel y las superficies mucosas de humanos y animales. Este microorganismo es considerado uno de los más frecuentes y de mayor significado clínico, se asocia con una diversidad de enfermedades que incluyen infecciones en piel y tejido blando hasta procesos infecciosos severos, tales como: bacteriemia, endocarditis, neumonía, meningitis, infecciones de heridas quirúrgicas y síndrome de shock tóxico (1,2). S. aureus produce una serie de factores de virulencia y enzimas extracelulares que se relacionan con la severidad de los cuadros clínicos; además, tiene una alta capacidad para adquirir resistencia a los antibióticos, lo cual puede implicar mayores complicaciones debido a dificultades con el tratamiento antimicrobiano (1).
A nivel mundial, las infecciones adquiridas en el hospital
constituyen un importante problema de salud pública debido a la morbi-mortalidad que ocasionan. Según un estudio auspiciado
por la Organización Mundial de la Salud, realizado en 55 hospitales de 14
países de las regiones de Europa, Mediterráneo Este, Sureste Asiático y
Pacífico Oeste, el 8,7% de los pacientes hospitalizados adquieren
infecciones relacionadas con los cuidados de salud (3).
S. aureus es uno de los principales patógenos asociados con infecciones adquiridas en el hospital. Es un microorganismo altamente invasivo y considerado como el principal responsable de infecciones del tracto respiratorio inferior e infecciones de heridas quirúrgicas y la segunda causa de bacteriemia intrahospitalaria, neumonía e infecciones cardiovasculares (4-9). Por otra parte, la emergencia de cepas resistentes a meticilina, las cuales suelen ser multirresistentes, agrava el problema, puesto que, las infecciones intrahospitalarias producidas por S. aureus resistente a meticilina (SARM) incrementan la morbi-mortalidad, prolongan la estancia hospitalaria y aumentan los costos derivados del uso de terapia antimicrobiana. Se estima que, en países en vías de desarrollo más del 30% de las infecciones adquiridas en instituciones hospitalarias son producidas por SARM (10).
S. aureus es un microrganismo ampliamente distribuido en el ambiente hospitalario y constituye un reto para los programas de control epidemiológico de las infecciones intrahospitalarias. Es comúnmente hallado en las fosas nasales y las manos del personal de salud; así como, en superficies como pisos, paredes, techos, mesas, interruptores eléctricos, manillas de puertas, camas, aparatos electrónicos, equipos de computación, fómites, instrumentos y equipos médicos; los cuales se convierten en potenciales reservorios y vehículos de transmisión de infecciones entre los pacientes (5,11,12).
La mayoría de las infecciones adquiridas en el hospital son de origen endógeno; siendo la microbiota del paciente la principal fuente. Sin embargo, el contacto con otros pacientes infectados o colonizados, el personal de salud y el ambiente hospitalario constituyen fuentes exógenas para la adquisición de patógenos hospitalarios (13). Se estima que, aproximadamente, de 20-40% de las infecciones intrahospitalarias tienen su origen en contaminación cruzada a través de las manos del personal de salud en contacto directo con los pacientes o, indirectamente, por contacto con superficies ambientales contaminadas (6,14).
La contribución de las superficies ambientales en la transmisión de patógenos intrahospitalarios está relacionada con diversos factores, incluyendo: la habilidad del microorganismo para permanecer viable en superficies inanimadas secas, la frecuencia con la cual los pacientes y el personal de salud entran en contacto con las superficies comúnmente contaminadas y los niveles de contaminación suficientemente altos como para permitir la transmisión a los pacientes (15).
Si bien está establecido que la diseminación de bacterias intrahospitalarias tiene causas multifactoriales y depende, en gran parte, de la interacción entre el hospedero, el microorganismo y el entorno; los factores considerados más importantes para la diseminación de S. aureus en los centros hospitalarios se relacionan con la capacidad de adaptación de la bacteria a diversas condiciones ambientales, la aglomeración de pacientes en espacios físicos reducidos, el incumplimiento de las normas básicas de asepsia y fallas en la identificación temprana de los portadores del microorganismo (8).
En vista de la importancia de S. aureus como patógeno
intrahospitalario, investigar su presencia en los ambientes de instituciones de
atención en salud, puede aportar datos para establecer el papel que desempeñan
las superficies inertes como reservorios y fuente de transmisión de este
microrganismo entre pacientes hospitalizados y personal de salud. Por lo tanto,
la presente investigación tiene como objetivo analizar la frecuencia y los patrones de susceptibilidad a
penicilina y meticilina de S. aureus aislados de la unidad de cuidados intensivos (UCI) y las salas
de cirugía de un centro hospitalario de Cuenca, Ecuador.
Métodos
Tipo y diseño
de la investigación: El estudio realizado fue de
tipo no experimental, descriptivo, ya que, durante el proceso de investigación
no se manipularon variables, ni condiciones de experimentación; sólo se observó
y describió el comportamiento de las variables. El diseño de
la investigación es transversal, puesto que, los datos se recolectaron y
evaluaron durante un tiempo establecido; es decir, se seleccionaron los
ambientes hospitalarios, se tomaron las muestras y se analizaron mediante
técnicas de laboratorio, con el objetivo de evaluar las variables en estudio.
Muestra: los ambientes hospitalarios seleccionados para el
estudio fueron los dos quirófanos y la sala de cuidados intensivos con dos
camas, existentes en un Hospital de la ciudad de Cuenca. Se recolectaron 50 muestras de
materiales instrumentales, equipos médicos y superficies de las áreas
mencionadas, distribuidas de la siguiente manera: 15 de cada uno de los dos
quirófanos y 10 de cada una de las dos camas ubicadas en la UCI. El muestreo
fue aleatorio simple.
Las muestras fueron recolectadas por duplicado con la ayuda de un hisopo
de algodón estéril humedecido con caldo soya tripticasa (CST), el cual se frotó
sobre las superficies de contacto frecuente (manijas de cortinas,
interruptores, piso, mesa para materiales, ventanas y lámparas), materiales
instrumentales y equipos médicos y se colocó en un tubo conteniendo CST. El
procesamiento de las muestras se ejecutó en el laboratorio de Biología
Molecular y Genética del Centro de Investigación, Innovación y Transferencia de
Tecnología, Universidad Católica de Cuenca.
Metodología: previo a su análisis
bacteriológico, las muestras fueron incubadas en aerobiosis por 4 horas a
35-37°C. Posteriormente, se inocularon en agar manitol salado e incubaron en
condiciones de aerobiosis, a una temperatura entre 35-37°C, durante 24-48 horas. Transcurrido el período de incubación, se procedió a la identificación
presuntiva mediante la selección de colonias fermentadoras del manitol, con
características morfológicas de microorganismos pertenecientes al género Staphylococcus. A partir de estas
colonias se realizó un extendido coloreado mediante la técnica de Gram. Si se
observaban cocos Gram positivos con predominio de racimos, se efectuó la
identificación definitiva mediante pruebas fenotípicas y detección genética del
gen nuc (16), que codifica para una
nucleasa específica de S. aureus.
La identificación fenotípica
de S. aureus se realizó mediante la
fermentación en agar manitol salado y las reacciones positivas de las pruebas
de coagulasa y desoxirribonucleasa (DNAsa).
Determinación fenotípica de susceptibilidad a antibióticos
beta lactámicos:
la
susceptibilidad a penicilina y oxacilina de los aislamientos de S. aureus se
determinó mediante el método de difusión del disco en agar, siguiendo los
lineamientos del Instituto para la Estandarización de Laboratorios Clínicos
(CLSI, por sus siglas en inglés) (17). Para tal fin, se preparó
con cada una de las cepas de S. aureus
a analizar, un inóculo bacteriano espectrofotométricamente estandarizado con el
patrón 0,5 del nefelómetro de MacFarland (625nm; DO: 0,8-1,0).
Con esta suspensión, se inoculó una placa de agar Müeller Hinton sobre la cual
se colocaron los discos de antibióticos penicilina G(10U) y oxacilina (1µg).
Las placas se incubaron en condiciones de aerobiosis, por 18-24 horas a 35°C.
Luego, se procedió a la lectura, midiendo los diámetros de los halos de
inhibición y los resultados se interpretaron de acuerdo con los criterios del
CLSI como: sensibles, intermedios o resistentes.
Extracción de ADN: para la extracción
de ADN de las cepas de S. aureus se
utilizó el método de lisis alcalina, el cual se describe brevemente a
continuación: Se suspendieron colonias de S.
aureus en 1ml de agua destilada, se centrifugó 10 minutos a 3000rpm y se
descartó el sobrenadante, se agregaron 50µl de solución de lisis formada por
dodecilsulfato sódico al 1% en NaOH 0,25N, se mezcló y se hirvió por 15
minutos, se añadieron 450µl de agua libre de nucleasas y se centrifugó por 20
segundos. El ADN extraído se conservó a -20°C.
Identificación genotípica de
S. aureus: la identificación molecular
de las cepas de S. aureus se realizó
mediante prueba de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) utilizando
iniciadores específicos para amplificar el gen nuc que codifica para una nucleasa
específica de especie (16). El producto amplificado, iniciadores y condiciones
de amplificación se muestran en la Tabla 1. Como controles positivos, se utilizó S. aureus ATCC® 11632 y S. aureus ATCC® 43300 y como control
negativo Streptococcus pyogenes (S.
pyogenes) ATCC® 12344.
Detección
genotípica de resistencia a beta-lactámicos: la técnica de PCR fue utilizada para la detección molecular de los genes
blaZ y mecA, que
codifican para resistencia a penicilina y meticilina, respectivamente (18-20). En la Tabla 1 se indican los iniciadores, productos amplificados
y condiciones de amplificación. Como
controles positivos se utilizaron las cepas ATCC® 11632 (blaZ +) y ATCC® 43300 (mecA +) y como
control negativo, S. pyogenes ATCC®
12344.
Tabla 1. Iniciadores, producto amplificado y condiciones de amplificación de genes nuc, blaZ y mecA
|
Producto amplificado (pb) |
Secuencia del iniciador 5’-3’ |
Condición de amplificación |
Referencia |
|
nuc (218) |
Forward:
GACTATTATTGGTTGATCCACCTG Reverse:
GCCTTGACGAACTAAAGCTTCG |
94
°C 5 min 30
ciclos: 94°C
1 min 54°C
1 min 72°C
1 min 72°C
10 min (Elongación final) |
Depardieu y col, 2004 |
|
blaZ (674) |
Forward: GTTGCGAACTCTTGAATAGG Reverse: GGAGAATAAGCAACTATATCATC |
94 °C 5 min 34 ciclos: 94°C 1 min 54°C 1 min 72°C 1 min 72°C 10 min (Elongación final) |
Olsen y col, 2006 |
|
mecA (310) |
Forward:
GTAGAAATGACTGAACGTCCGATGA Reverse: CCAATTCCACATTGTTTCGGTCTAA |
94
°C 5 min 30
ciclos: 94°C
1 min 62°C
30 seg 72°C
35 seg 72°C
10 min (Elongación final) |
Elhassan y col, 2015; Harrison y col, 2014 |
Todas las reacciones de PCR, tanto para la
detección del gen nuc como para los genes blaZ y mecA, se llevaron a cabo en un volumen total
de 20μl conteniendo: 10μl de Mastermix GoTaq Green 2X de Promega con 400μM de cada uno de los
dNTP y 3mM MgCl2, 1,5μl de cada
iniciador, 1,5μl del ADN extraído y 5,5μl de agua pura.
Las amplificaciones se realizaron en un termociclador
PIKO (Finnzymes) según los protocolos
mencionados en la Tabla 1. La separación de los productos de
PCR se realizó por electroforesis en geles de agarosa (1,5%p/v) sobre un cámara
horizontal sumergidos en buffer TBE (Tris 90mM-Borato 90mM-EDTA 2mM) con
Bromuro de Etidio al 0,5µg/ml, a 70V, 70A
y 50 W por 2 horas. El tamaño de los productos de PCR se calculó de acuerdo con
sus migraciones en los geles de agarosa comparándolo con la migración de las
bandas de ADN patrón del marcador de peso molecular Trackit
de Invitrogen (1 Kb Plus DNA ladder) y se fotografiaron
sobre un transiluminador con una cámara digital.
Análisis estadístico: los datos obtenidos fueron organizados en tablas y
figuras. El análisis estadístico se realizó utilizando el paquete estadístico
SPSSTM versión 19.0
(SPSS, Inc. Chicago, USA) para WindowsTM.
Para establecer si existe alguna relación de asociación entre el ambiente
hospitalario y la presencia de S. aureus
se utilizó el estadístico de contraste X2 (Chi-cuadrado),
con un nivel de significancia del 95%.
Resultados
En este estudio, se demostró una frecuencia de 6% de S. aureus
contaminando las superficies de los ambientes hospitalarios analizados. La
distribución de las cepas obtenidas fue la siguiente: un aislamiento procedió
de una mascarilla utilizada para anestesia general perteneciente al quirófano
1; mientras que, las otras dos cepas se aislaron de muestras obtenidas de un
dispositivo de succión y de un equipo de intubación, ambos dispuestos en el
perímetro correspondiente a la cama 1 de la UCI. No se recuperó S. aureus de los especímenes provenientes
del quirófano 2 y de las adyacencias a la cama 2 de la UCI (Tabla 2).
Tabla 2. Distribución de S. aureus en muestras ambientales de un centro hospitalario.
|
Ambiente |
Positivo N (%) |
Negativo N (%) |
|
Quirófano 1 |
1(6,6) |
14(93,4) |
|
Quirófano 2 |
0 |
15(100) |
|
Sala de
cuidados intensivos Cama 1 |
2(20) |
8(80) |
|
Sala de
cuidados intensivos Cama 2 |
0 |
10(100) |
|
Total |
3(6) |
50(94) |
Las 3 cepas identificadas por pruebas bioquímicas como S. aureus amplificaron el fragmento
218pb, correspondiente al gen nuc, lo cual confirman su identificación genotípica.
De las 3 cepas S. aureus
aisladas a partir de muestras ambientales, 2 (66,6%) fueron resistentes a
penicilina y meticilina, por el método de difusión del disco en agar, mientras
que, una cepa resultó sensible a estos dos antimicrobianos.
En relación con la detección de los genes de resistencia a
beta-lactámicos, las dos cepas resistentes, por el método fenotípico,
amplificaron los fragmentos 674pb y 310pb, por lo tanto, poseen los genes blaZ y mecA, que codifican para
resistencia a penicilina y meticilina, respectivamente (Figuras 1 y 2).
Figura 1. Productos de PCR para el gen blaZ (674pb) en S. aureus aislados de ambientes hospitalarios: carril 1: marcador de PM; carril 2 cepa control positivo; carriles 3 cepa control negativo; carriles 4 cepa negativa: carriles 5 y 6, cepas positivas.
Figura 2. Producto de PCR para el gen mecA (310 pb) en S. aureus aislados de ambientes hospitalarios: Carril 1 marcador de PM, Carril 2 cepa control positivo, Carril 3 cepa control negativo, carril 4 cepa negativa, carriles 5 y 6 cepas positivas.
Discusión
Las
superficies ambientales, fómites, equipos e instrumentos médicos son
reconocidos como importantes reservorios de patógenos intrahospitalarios
productores de infecciones asociadas con cuidados de salud. En este estudio,
mediante el cual se evaluó la presencia de S.
aureus en dos quirófanos y una UCI, se recuperó este microorganismo en 6%
de las muestras analizadas. Los resultados de esta investigación coinciden con
los reportados por Chávez y col (8), quienes
analizaron la frecuencia de S. aureus en varios servicios de un
hospital de Cali-Colombia y comunicaron 6,1% de aislamiento en la UCI. De igual
modo, Al-Abdli y BIau (21), reportaron 10% de S. aureus en la unidad de diálisis de
un hospital de Libia; sin embargo, estos autores comunicaron un porcentaje de
recuperación de este microrganismo en la UCI de 23,8%, lo cual discrepa de los
resultados de este estudio.
Otros autores han hallado porcentajes ligeramente superiores a los
encontrados en este estudio. Así, Gharsa y col (1), en un estudio realizado en
diferentes servicios de un hospital de Tunes, reportaron 12% de S. aureus; estos aislamientos fueron
recuperados en diferentes unidades, mostrando una amplia distribución de este
microorganismo en el ambiente hospitalario. Otros autores, Ekrami
y col (22), Mukhiya
y col (23), Tagoe
y Desbordes (24), evaluaron la presencia de esta bacteria en muestras provenientes de
diversas superficies hospitalarias y reportaron porcentajes de positividad
similares que oscilan entre 13,7-14,42%.
Al contrastar las publicaciones de otros autores con los resultados de
la contaminación de los ambientes hospitalarios evaluados en esta
investigación, se aprecia una notable discrepancia en la frecuencia de
aislamiento de S. aureus. En este
sentido, Rivera y col (5), en un estudio
realizado en un hospital de Perú, recuperaron 26,6% de S. aureus en muestras provenientes de salas de cirugía y salas de parto: mientras que, Oie y
col (25), en un centro de
servicios de salud japonés, comunicaron 27% de aislamiento de este
microorganismo en especímenes recolectados de superficies inanimadas. Por otra
parte, Odoya y col (4), en un hospital nigeriano, indican contaminación por este
agente microbiano superior al 50% en especímenes ambientales de diversas áreas
hospitalarias.
Las variaciones en el aislamiento de patógenos hospitalarios, como S. aureus, pueden relacionarse con
factores como la técnica de muestreo, los métodos de cultivo y aislamiento
bacteriano, la facilidad y grado de contaminación de las superficies y objetos
inanimados, la capacidad de la cepa de mantenerse viable por períodos prolongados
en ambientes secos, la resistencia bacteriana a los desinfectantes y
antisépticos utilizados para la limpieza, la aglomeración de pacientes y
personal en las salas de servicios de salud, la falta de protocolos
estandarizados para la higiene y desinfección de los ambientes hospitalarios,
la frecuencia de brotes epidémicos en el hospital y la rotación de pacientes en
las camas hospitalarias (15,26).
Investigaciones a nivel mundial han analizado la distribución de S. aureus en ambientes hospitalarios y;
en general, existe consenso en cuanto a que estas áreas constituyen reservorios
de este patógeno. No obstante, el papel de estas superficies como fuente de
infección estafilocócica es controversial. Por una parte, Price y col (27), en un estudio realizado en un
centro de salud, encontraron que, aunque esta bacteria es frecuentemente
aislada en la UCI, sólo en dos casos demostraron asociación directa entre el
medio ambiente y la adquisición de infección por S. aureus. Por otra parte, otros autores (14) indican que, cuando los pacientes
ocupan camas dejadas por otros, quienes han padecido infecciones
intrahospitalarias, tienen una mayor probabilidad de infectarse con el mismo
patógeno; lo cual evidencia como las camas y las superficies adyacentes
representan fuentes de contaminación microbiana.
Otros estudios han asociado la contaminación de las superficies ambientales con la
mitad de las epidemias por SARM en diversos hospitales. Además, los datos de un estudio retrospectivo,
realizado por Watson y col (28), entre 2005-2009, en diferentes
hospitales de California, Estados Unidos; establecieron una asociación entre la
contaminación ambiental y la transmisión de SARM y; además, se demostró que la
inclusión de protocolos estrictos de limpieza, favorecen la protección de los
pacientes contra infecciones intrahospitalarias.
Desde el descubrimiento de la penicilina, en 1940, el
uso de este antibiótico para el tratamiento de infecciones por S. aureus y el rápido desarrollo de
resistencia antimicrobiana han sido ampliamente documentados. En la actualidad,
aproximadamente, el 90% de las cepas aisladas de cuadros clínicos son
resistentes a penicilina (18). Ahora bien,
los asilamientos de muestras ambientales obtenidos en esta investigación mostraron
una alta resistencia a penicilina, puesto que, de las 3 cepas de S. aureus aisladas, 2 (66,6%)
presentaron el gen blaZ
y el fenotipo de resistencia a penicilina.
Numerosas investigaciones científicas han evaluado la
susceptibilidad a meticilina de S. aureus
aislados a partir de muestras clínicas y de ambientes hospitalarios. Las cepas
resistentes a este antibiótico también lo son a la mayoría de los
antimicrobianos beta-lactámicos (1); además, los
aislamientos resistentes a meticilina suelen portar genes de resistencia a
múltiples antibióticos, lo cual puede limitar el uso de otros antimicrobianos
para el tratamiento de cuadros clínicos provocados por SARM.
El porcentaje de resistencia a meticilina de las cepas
ambientales de S. aureus aisladas en
esta investigación fue de 66,6% (2/3), resultados similares han sido reportados
por Wille y col (29), quienes comunicaron 64% de aislamientos resistentes a
meticilina en muestras de superficies inanimadas. De igual modo, Ekrami y col (22), analizaron el comportamiento frente a este agente
antimicrobiano de cepas de S. aureus
obtenidas de muestras del medio ambiente de siete hospitales iraníes y
publicaron 60% de resistencia.
Otros
autores Chávez y col, en Colombia (8); Mukhiya y col (23), en Nepal y Al-Abdli (21), en Libia; analizaron los patrones de susceptibilidad a
meticilina en aislados de diferentes áreas hospitalarias y encontraron entre
32-45,9% de resistencia a este antimicrobiano.
En contraste
con los resultados de este estudio, Price y col (27), evaluaron la transmisión de S. aureus entre trabajadores de salud, medio ambiente y pacientes
de una UCI. Durante el análisis, los autores obtuvieron 12,92% de resistencia a
meticilina en las cepas de S. aureus
ambientales.
En conclusión, la baja frecuencia de aislamientos de S. aureus en
este estudio puede estar relacionada con los ambientes muestreados; ya que, las
superficies examinadas están ubicadas en áreas en las cuales se hace énfasis en
la aplicación de protocolos de higiene y desinfección para asegurar una
adecuada descontaminación. Por otra parte, el volumen de pacientes atendidos en
el hospital es relativamente bajo; por lo tanto, no existen condiciones de
hacinamiento debidas a la aglomeración de pacientes y personal de salud, que
faciliten la transmisión de microorganismos. Además, la media de estancia
hospitalaria es baja, lo cual disminuye las posibilidades de transmisión de
patógenos entre los pacientes. No obstante, es necesario el análisis de otras
salas del hospital, para evaluar su papel como posibles reservorios de S. aureus y otros patógenos
intrahospitalarios.
En vista que, la mayoría de los aislamientos
de S. aureus obtenidos portaban genes
de resistencia a penicilina y meticilina, es recomendable mantener medidas de
vigilancia epidemiológica de la resistencia de las cepas aisladas, tanto de
pacientes como de superficies ambientales, a fin de controlar la diseminación
de cepas multirresistentes, principalmente SARM; importante patógeno
intrahospitalario productor de procesos infecciosos graves que pueden prolongar
la estancia hospitalaria, generar altos costos y comprometer la vida del
paciente.
Esta investigación se vio limitada por la
falta de protocolos estandarizados para la evaluación de la contaminación
microbiana de los ambientes hospitalarios.
Conflicto de Intereses
Los autores declaran no presentar conflictos de intereses.
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Contribución
de los Autores
ATC y OBP: concepción y diseño del estudio, análisis e
interpretación de datos, análisis estadístico, revisión crítica del artículo.
Elaboración del manuscrito y aprobación de la versión final a ser publicada
©2019. Los Autores. Kasmera. Publicación del Departamento de Enfermedades Infecciosas y Tropicales de la Facultad de Medicina. Universidad del Zulia. Maracaibo-Venezuela. Este es un artículo de acceso abierto distribuido bajo los términos de la licencia Creative Commons atribución no comercial (https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/) que permite el uso no comercial, distribución y reproducción sin restricciones en cualquier medio, siempre y cuando la obra original sea debidamente citada.